B淋巴细胞与抗体合成有关，是体液免疫反应的效应细胞。
B细胞表面带有膜表面免疫球蛋白(SmIg)、Fc受体及补体受体等。
它可与抗原抗体复合物的Fc段牢固结合。
选用鸡或羊红细胞，用相应的抗红细胞抗体致敏成EA复合物，B细胞的Fc受体能与EA结合形成花环，称EA花环。
如果EA复合物再加上补体，与B细胞的补体受体结合，则形成EAC花环。
B细胞表面有鼠RBC受体，能与小鼠RBC结合，形成鼠红细胞花环(M-RFC)，主要结合于带有IgM受体的B细胞上，形成M-RFC的多为幼稚B细胞。
本试验临床上主要用于检测B淋巴细胞的数量及判断体液免疫水平。
- 检查部位：免疫系统
- 科室：
- 空腹检查：否
- 禁忌人群：
- 参考价格：
鼠红细胞花环形成试验——检查细节、注意事项、步骤、结果解读
鼠红细胞花环形成试验——检查项目的不适宜人群：
暂无内容
鼠红细胞花环形成试验——检查项目的注意细节：
(1)温育时间：ME花环百分率随温育时间延长而逐渐增加，温育1h，ME百分率为7.4±3.1%，而温育18h，增至18.3±3.8%，温育72h后，花环数又逐渐降至3.4±7.1%。
(2)培养液：以用Tc199培养液最为适宜，其结果及重复性均好。用Hepes缓冲的RPMl1640培养液洗涤和重悬淋巴细胞和红细胞，导致细胞趋向聚集，而形成大块细胞，从而产生不可靠的结果。
(3)红细胞与淋巴细胞的最适比例约为35∶1，比例>60∶1，或比例<25∶1时，ME花环数可减低。
(4)保存MRBC的培养液：在Alsever液中，MRBC4℃保存1周仍可产生稳定的花环数，而在PBS，生理盐水或Tc199培养液中保存的MRBC，随着保存时间延长，花环数逐渐下降，保存72h后，只能看到小数花环或无花环形成细胞。
鼠红细胞花环形成试验——检查项目的一般步骤：
(1)取1ml上述小鼠红细胞悬液，加3ml生理盐水混匀，1500r/min，离心10min，共洗3次，最后用生理盐水配成1%小鼠红细胞悬液(约1.4×108个细胞/ml)。
(2)取受检者1.5ml肝素抗凝血，用淋巴细胞分层液分离淋巴细胞，用含20%小牛血清Hank液调整细胞浓度为2×107/ml。
(3)取淋巴细胞悬液0.1ml，加等量1%小鼠红细胞悬液，混合后置37℃水浴10min，500r/min，离心10min，放4℃冰箱2～3h。
(4)用毛细管吸取0.05ml上清液，加1滴2g/L美蓝溶液，轻轻旋转使混匀，取1滴混合物放在玻片上，覆以盖玻片，待细胞下沉后，用高倍镜检查。
鼠红细胞花环形成试验——检查项目结果解读：
(1)取1ml上述小鼠红细胞悬液，加3ml生理盐水混匀，1500r/min，离心10min，共洗3次，最后用生理盐水配成1%小鼠红细胞悬液(约1.4×108个细胞/ml)。
(2)取受检者1.5ml肝素抗凝血，用淋巴细胞分层液分离淋巴细胞，用含20%小牛血清Hank液调整细胞浓度为2×107/ml。
(3)取淋巴细胞悬液0.1ml，加等量1%小鼠红细胞悬液，混合后置37℃水浴10min，500r/min，离心10min，放4℃冰箱2～3h。
(4)用毛细管吸取0.05ml上清液，加1滴2g/L美蓝溶液，轻轻旋转使混匀，取1滴混合物放在玻片上，覆以盖玻片，待细胞下沉后，用高倍镜检查。
